DERMATOSIS POR HONGOS Y LEVADURAS: DERMATOFITOSIS

PANORAMA GENERAL
¿CÓMO ES?
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
¿CÓMO SE DIAGNOSTICA?
¿CÓMO SE TRATA?
COMENTARIOS

Perspectivas de los conocimientos clínicos creado por Jennifer Pendergraft, Doctora en Medicina Veterinaria, Diplomada por el ACVD

PANORAMA GENERAL

Infección en el pelo, estrato córneo y uñas causada por hongos que consumen proteínas de los géneros Microsporum y Trichophyton. Los más comunes son el M. canis, M. gypseum, y T. mentagrophytes
No es frecuente que se presente una forunculosis y posterior infección dérmica y subcutánea.
El M. canis es la causa más frecuente de la dermatofitosis en el perro y en el gato. Algunos, en especial los gatos, son portadores asintomáticos.
La dermatofitosis se presenta mediante el contacto con el pelaje infectado o Escama de los animales infectados o portadores, fómites o esporas en suelos o ambientes contaminados. Las esporas infecciosas pueden permanecer viables en el ambiente hasta 18 meses.
El M. canis es un dermatofito zoofílico. Los huéspedes principales son los perros y los gatos. Suele presentarse en ambientes de refugio o en hogares con muchas mascotas.
El M. gypseum es un dermatofito geófilo que habita en el suelo.
El T. mentagrophytes se transmite mediante el contacto con huéspedes de reservorio (en general, roedores) o sus ambientes.
La incidencia de los dermatofitos parece tener una variabilidad geográfica.
Los individuos inmunodeprimidos, geriátricos o jóvenes son los que tienen mayor riesgo de infección.
Es probable que la genética esté involucrada ya que los gatos persas y los Yorkshire Terriers están sobrerrepresentados y algunos individuos de otras razas parecen tener predisposición a infecciones recalcitrantes o repetitivas.
Es común el crecimiento excesivo simultáneo de las especies de Staphylococcus.
Una zoonosis es posible con las tres especies, pero la más frecuente es con el M. canis.

¿CÓMO ES?

BIBLIOTECA DE IMÁGENES SOBRE LA PATOLOGÍA: DERMATOFITOSIS

Photo of dermatophyte test medium (right) and enhanced sporulation agar (left) are innoculated with plucked hair and scale.

Figura 1. El Medio para Prueba de Dermatofitos (MPD) (derecha) y el agar para esporulación mejorado (izquierda) son inoculados con pelos arrancados y Escama.

Photo of a positive culture demonstrates color change and buff- colored colonies in the dermatophyte test medium (right) after 8 days of incubation. The color change occurred within 24 hours of colony growth.

Figura 2. El cultivo positivo muestra cambio de color y colonias buff-colored (teñidas de rojo) en la MPD (derecha) luego de 8 días de incubación. El cambio de color ocurrió dentro de las 24 horas durante el crecimiento de la colonia.

Photo of positive culture demonstrates color change and buff- colored colonies in the dermatophyte test medium after 14 days of incubation. The color change occurred within 24 hours of colony growth.

Figura 3. El cultivo positivo muestra cambio de color y colonias buff-colored (teñidas de rojo) en la MPD luego de 14 días de incubación. El cambio de color ocurrió dentro de las 24 horas durante el crecimiento de la colonia.

Micrograph of macroconidia of M canis from a positive culture. Note that each spore has more than 6 divisions.

Figura 4. Macroconidia de M. canis de un cultivo positivo. Notar que cada espora tiene más de 6 divisiones.

Micrograph of macroconidia of M. gypseum from a positive culture. Note that each spore has 6 or fewer divisions.

Figura 5. Macroconidia de M. gypseum de un cultivo positivo. Notar que cada espora tiene 6 divisiones o menos divisiones.

Photo of microconidia of T. mentagrophytes from a positive culture.

Figura 6. Microconidia de T. mentagrophytes de un cultivo positivo.

Photo of feline patient with multifocal alopecia, erythema and scale due to M. canis infection.

Figura 7. Paciente felino con alopecia(s) multifocal, eritema y escama debido a una infección por M. canis.

Photo of positive Wood's light examination in a feline patient with multi focal alopecia and scale due to M. canis. Note blue/green color change associated with the hair shafts.

Figura 8. Examen con lámpara de Wood positivo en un paciente felino con alopecia(s) multifocal y escama debido a M. canis. Notar el cambio de color azul/verde relacionado con la base de los pelos.

Photo of canine patient with nodular dermatophytosis

Figura 9. Paciente canino con una lesión de dermatofitosis nodular (“querion”) debido a una infección por T. mentagrophytes.

Dog with CARF that mimics severe flea allergy dermatitis with secondary <em>Malassezia</em> and <em>staphylococcal</em> colonization

Figura 10. Paciente canino con alopecia(s), eritema y costras debido a una infección por T. mentagrophytes similar al pénfigo foliáceo.

Photo of canine patient with alopecia, erythema, and crusting due to <em>T. mentagrophytes</em> infection.

Figura 11. Paciente canino con alopecia(s), eritema y costras debido a la infección por T. mentagrophytes.

Photo of canine patient with alopecia, erythema, and crusting due to T. mentagrophytes infection.

Figura 12. Paciente canino con alopecia(s), eritema y costras debido a una infección por T. mentagrophytes.

Photo of canine patient with single-limb alopecia, erythema, and crusting due to T. mentagrophytes infection.

Figura 13. Foto de un paciente canino con una alopecia(s), eritema y costras en una extremidad debido a una infección por T. mentagrophytes

¿CÓMO ES?

Los signos clínicos no son específicos y, en general, comprenden:

Alopecia(s)
Pelaje quebradizo
escara(s) con piel seca o grasosa
Eritema
Pápula(s)
Pústula
Costra(s)
Dermatitis papular (dermatitis Miliar(es))

Presentaciones no frecuentes:

Acné en el mentón en felinos
Nódulo(s)
Trayectos fistulosos
Onicodistrofia (forma o textura anormal de la uña)
Paroniquia (inflamación de la piel que rodea la uña)

Se pueden presentar de manera focalizada o generalizada y pueden afectar el tronco, las extremidades, la cola o las áreas faciales, incluso los pabellones de las orejas.
El prurito suele ser leve pero puede no aparecer o ser grave.
Las lesiones pueden no tener forma de anillo como la clásica “tiña” en humanos.
La dermatofitosis suele sobrediagnosticarse en los perros y se afirma para estas especies: “Si parece tiña, probablemente es un pioderma por estafilococos”.

PANORAMA GENERAL DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL

Los diagnósticos diferenciales más frecuentes son los siguientes:

Piodermia por estafilococos
Demodicosis
Cheyletiellosis
Sarna sarcóptica (afectación del margen de la oreja y la extremidad distal)
Síndrome de hipersensibilidad felina (hipersensibilidad a la picadura de pulga, reacción adversa cutánea al alimento y dermatitis atópica).
Pénfigo foliáceo
Vasculitis (afección de las extremidades distales)
Linfoma cutáneo epiteliotrópico

Cabe destacar que la piodermia por estafilococos a veces se presenta simultáneamente y resulta en lesiones similares.

Los diferenciales en las presentaciones poco frecuentes son las siguientes:

Nódulo(s): diferenciales de síndromes infecciosos, neoplásicos, inflamatorios estériles, dermatitis canina acral por lamido, reacción a un cuerpo extraño y reacción a una vacuna o droga.
Onicodistrofia: diferenciales de infección bacteriana, Onicodistrofia simétrica lupoide, vasculitis y pénfigo foliáceo.

¿CÓMO ES? ¿CÓMO SE DIAGNOSTICA?

DIAGNÓSTICO

Comentarios generales

El cultivo fúngico es la técnica de diagnóstico más sensible y específica y se requiere para determinar las especies de dermatofitos involucrados.
Se recomienda la identificación de la especie para comprender mejor el modo de contagio y poder desarrollar las estrategias para el control.

Lámpara de Wood

Esta técnica no es sensible ni específica, ayuda para la identificación del M. canis y resulta positiva en aproximadamente el 50% de los casos. Cuando resulta positiva, es útil para seleccionar las áreas para cultivo. Sin embargo, un resultado negativo no descarta una infección por dermatofito.

Técnica:

Una lámpara de Wood (longitud de onda 340-450 nm) se utiliza para examinar al paciente.
El paciente es examinado en un ambiente oscuro con la luz alumbrando a pocoscentímetros de distancia de la piel.
El resultado es positivo si el pelo se ve amarillo-verde fosforescente.
Las evaluaciones de falso positivo son comunes ya que los productos de uso tópico y las Escara(s) también pueden verse fluorescentes.

Tricograma

Se arrancan pelos y se examinan con aceite mineral en un objetivo 10X.
Se puede obtener una mejor visualización mediante el uso de KOH o clorofenol como “agentes para aclarar la queratina” en lugar de aceite mineral.
La presencia de hifas, conidios o artrosporas es característico de la dermatofitosis.
Las raíces de pelos infectados pueden estar inflamados o deshilachados con una corteza irregular.
Esta técnica no identifica las especies de dermatofitos.
Esta técnica no es tan sensible como el cultivo.

Cultivo fúngico (Medio para Prueba de Dermatofitos)

Técnica de toma de muestras:

Se aplica alcohol al pelaje y a la piel, previo a la toma de la muestra, para reducir el crecimiento de saprófitos.
Se arrancan pelos con una pinza de diversos sectores que se encuentran en la periferia de las lesiones activas.
Los pelos se aplican con cuidado en el medio para prueba de dermatofito, asegurándose de que los bulbos estén en contacto con el medio.
Los extremos distales de los pelos largos pueden recortarse como ayuda en la aplicación previa, o posterior al arranque del pelo.
También se toman muestras de escamas y Costra(s) con una hoja de bisturí o peine fino para pulgas y se aplican en el medio.
En casos de una posible onicomicosis, se deben aplicar las muestras de uñas en el medio.

Técnica de cepillo de dientes de Mackenzie:

Esta técnica se utiliza para detectar la condición de portador de un paciente o para evaluar áreas amplias.
Se utiliza un cepillo de dientes estéril para cepillar al animal para la evaluación, o el cepillado puede estar limitado solo a las áreas afectadas.
Las cerdas se incorporan al medio o se colocan las escamas/ pelos extraídos en el medio.
El medio se incuba a temperatura ambiente o en una incubadora (30°C, 30% humedad).
El medio se evalúa diariamente durante tres semanas en un hospital o en un laboratorio.
El cambio de color del medio dentro de las 24 horas de crecimiento de la colonia de blanco a crema es indicador de la posible presencia de un dermatofito.
La macroconidia se produce varios días después del crecimiento de la colonia y se utiliza para identificar las especies de dermatofitos.
Para analizar la macroconidia, se coloca un fragmento de cinta de acetato limpia sobre la superficie de la colonia, se aplica tintura oscura en un portaobjeto, se coloca la cinta sobre la tintura y se examina microscópicamente con un objetivo 10x.
Para analizar la presencia de nódulos, se debe realizar un cultivo de tejido fúngico en un laboratorio de diagnóstico, porque los cultivos de pelos arrancados pueden resultar negativos.

Citología

Se recomienda la citología para los nódulo(s) y trayectos fistulosos ya que pueden observarse artrosporas en un exudado piogranulomatoso.

PCR

Una prueba de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR por sus siglas en inglés) para M. canis ha sido desarrollada con elevada sensibilidad y especificidad. Aun no se encuentra disponible comercialmente.

Histopatología

La histopatología puede identificar dermatofitos, pero no identifica las especies. Por consiguiente, se recomienda el cultivo fúngico.
Se pueden usar tintes especiales (PAS, GMS) para mejorar la visualización de las esporas y las hifas.
Se puede observar una foliculitis y forunculosis con dermatitis piogranulomatosa, pero puede no haber presencia de dermatofitos en secciones examinadas incluso con la ayuda de tintes especiales.
Los resultados histopatológicos pueden simular pénfigo foliáceo y pénfigo eritematoso, incluso la presencia de acantólisis, en especial con infección de T. mentagrophytes.
Se indica la histopatología en lesiones nodulares. La mayoría de las veces es notoria la inflamación piogranulomatosa pero, como sucede en las presentaciones más comunes, los elementos fúngicos pueden no estar presentes. Se recomienda realizar cultivos tanto bacteriano como fúngico.

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL ¿CÓMO SE TRATA?

¿CÓMO SE TRATA?

El tratamiento implica un enfoque en múltiples elementos: terapia tópica o sistemática, tratamiento del ambiente y en el caso del M. canis evaluación de caninos y felinos portadores que se encuentran en la casa.
Realice otro cultivo para reconfirmar en las semanas 1-3 luego de haber comenzado la terapia y cada 1-3 semanas a partir de entonces. El tratamiento debe continuarse hasta que 2-3 cultivos den negativo.
La duración del tratamiento es variable y puede durar desde 14 días hasta 6 meses.
Puede suceder una resolución espontánea dentro de los tres meses.

TERAPIA TÓPICA

En todos los casos de dermatofitosis se recomienda la terapia antifúngica tópica como ayuda para resolver el problema y para reducir el contagio del entorno.
El recorte de pelo ayudará a la aplicación de la terapia tópica y a eliminar los tallos de pelos infectados. Sin embargo, el pelo recortado se debe desechar para evitar la contaminación del ambiente.

Enjuagues

Los baños de inmersión con cal de azufre en concentración del 2-4% son una terapia única y efectiva para la dermatofitosis y se aplica una a dos veces por semana.
Los enjuagues que contengan miconazol 2% o enilcolazol 0,2% son efectivos y son preferibles respecto a los aerosoles y toallas húmedas porque saturan y se distribuyen mejor. Deben realizarse de una a dos veces por semana.

Cremas, ungüentos y lociones

Estos preparados se utilizan mejor en las lesiones focales y se aplican cada 12-24 horas.
Los ingredientes activos que tienen son: clotrimazol 1%, miconazol 1-2%, terbinafina 1%, tiabendazol 4%, anfotericina B 3%, eniconazol 0,2% y nistatina.

Shampoos

La terapia con shampoo tiene poca actividad residual y es menos efectiva que las otras terapias tópicas.
Los ingredientes activos fúngicos que tienen son: ketoconazol 1-2% y miconazol 2%. Se recomienda que los preparados contengan clorhexidina.

TERAPIA SISTÉMICA (ORAL)

Se recomienda el tratamiento sistémico antifúngico en combinación con la terapia tópica para los pacientes que presentan lesiones generalizadas o multifocales, para los que conviven en un hogar con otras mascotas, los pacientes de pelo largo, con Nódulo(s), onicomicosis y lesiones focales que no responden a la terapia tópica.
La terapia sistemática se selecciona de manera empírica. Los laboratorios no realizan rutinariamente cultivos y pruebas de sensibilidad a dermatofitos, y los puntos de susceptibilidad confiables y reproducibles aún deben establecerse y correlacionarse con la eficacia clínica.

Medicamento	Dosis	Notas
Ketoconazol	5-10 mg/kg VO cada 24 horas	Dar con alimento; no recomendado para gatos debido a los efectos secundarios y la baja eficacia en comparación con otros azoles.
Itraconazol	5-10 mg/kg VO cada 24 horas o 2 días consecutivos por semana	Dar con alimento; dosis de > 10 mg/kg pueden ocacionar vasculitis y ulceración en la piel en perros
Fluconazol	10 mg/kg VO cada 24 horas
Terbinafina	30 mg/kg VO cada 24 o 2 días consecutivos por semana
Griseofulvina	Micronizada: 25 mg/kg cada 12 horas Ultramicronizada: 5-10 mg/kg VO cada 24 horas	En los gatos puede ocacionar supresión de la médula ósea; no usar en caso de VIF o VLFel positivos; dar con un alimento de alto contenido graso

Estos antifúngicos pueden inducir a una hepatotoxicidad y deben ser evitados o usados con precaución en pacientes con hepatopatías. Se deben evaluar las enzimas hepáticas (ALP, FA1) cada 2-4 semanas.
Existen muchas interacciones farmacológicas con la clase de azoles y se deben evaluar los medicamentos administrados de manera simultánea.
Puede presentarse vómitos y diarrea con los antimicrobianos sistémicos mencionados.
Lufenuron ha sido sugerido como tratamiento para la dermatofitosis pero no demostró ser efectivo en los ensayos de control.

CONTROL AMBIENTAL

Las esporas del M. canis pueden ser viables hasta 18 meses. El control ambiental puede reducir la reinfección del paciente, de los humanos y de los otros animales del hogar.
La falta de control puede hacer que el tratamiento no funcione u ocurran recaídas.
Considere las siguientes medidas:
- Los animales que tuvieron como resultado un cultivo positivo deben estar aislados de los animales que tuvieron como resultado un cultivo negativo, preferentemente en un ambiente fácil de limpiar, ordenado y con pocos tapizados.
- Trate las superficies no porosas con cloro de uso doméstico 1:10 o eniconazol (no disponible en EE.UU.), dos veces por semana.
- Pase la aspiradora en las áreas donde los animales infectados habitan diariamente y limpie los pisos/paredes con telas de microfibra, electrostáticas.
- La tapicería debe ser tratada con Lysol en aerosol.
- Deseche la ropa de cama y alfombras difíciles de desinfectar.
- Limpie los conductos/ventilaciones y reemplace los filtros de horno.
- Importante: la limpieza a vapor sola no es efectiva ya que la temperatura que alcanza no es lo suficientemente elevada para matar las esporas.
Realizar un cultivo del ambiente (hogar o refugio) puede ser útil para determinar si las medidas de control son efectivas. Se pueden limpiar las superficies con telas electrostáticas o gasa y luego colocar en la superficie del medio de cultivo tres veces para inocular.
Para los pacientes con T. mentagrophytes, reduzca la exposición a los hábitat de roedores o se recomienda el control de roedores. Si los roedores son mascotas domésticas, deben someterse a un control mediante la técnica del cepillo de dientes de Mackenzie.

CONTROL DEL HOGAR DONDE CONVIVEN MUCHAS MASCOTAS

Todos los perros y gatos del hogar deben ser evaluados para detectar si son portadores o no (técnica del cepillo de dientes de Mackenzie), en especial cuando se identifica el M. canis.
Los animales que tuvieron como resultado un cultivo positivo deben estar aislados de los que tuvieron un cultivo negativo. Se debe brindar cuidado y tratamiento primero a los animales no infectados para evitar la propagación.
Trate a los animales expuestos y con resultado de cultivo positivo concal de azufre 2-4% o antifúngicos sistémicos hasta obtener dos cultivos negativos.
Se debe realizar el control ambiental ya mencionado.
Se puede encontrar más información y recomendaciones sobre refugios o pensiones para gatos en las referencias sugeridas.
Si hubiera presencia de T. mentagrophytes y los roedores o conejos son mascotas, realice la técnica del cepillo de dientes de Mackenzie para detectar si estas mascotas son portadoras.

PREVENCIÓN DE ZOONOSIS E INFECCIONES NOSOCOMIALES

Indique a los clientes que se laven las manos luego de manipular la mascota.
Los animales positivos a dermatofitos deben estar aislados de otros pacientes y se deben usar guantes durante la evaluación. Previo a examinar otro paciente, se debe cambiar la bata de laboratorio.
Desinfecte la sala de evaluación con cloro 1:10 o eniconazol.

¿CÓMO SE DIAGNOSTICA? COMENTARIOS

COMENTARIOS

Las causas de fracaso del tratamiento son la duración inadecuada del tratamiento, mal control ambiental y una condición inmunodepresora, como el VIF o VLFel en gatos y el hiperadrenocorticismo en perros.
El pronóstico es bueno a excepción de ambientes muy contaminados como pensiones para gatos, refugios y hogares con varios animales infectados. Lea las referencias sugeridas para más consejos sobre cómo manejar estas situaciones.
Indique a los clientes o al personal en contacto con pacientes con resultado positivo que deben consultar a un médico si presentan lesiones en la piel.

Referencias

¿CÓMO SE TRATA?